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細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒

2020/3/19 8:29:39

背景[1-6]

細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA的離心吸附柱和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)提取細(xì)菌(革蘭氏陽(yáng)性菌和陰性菌)的基因組DNA。溶菌酶能有效去除細(xì)菌細(xì)胞壁;蛋白酶K能把核酸解離出來(lái);RNaseA能去除痕量的RNA污染;離心吸附柱能夠高效、專(zhuān)一吸附DNA,限度去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物,提取的基因組DNA片段大,純度高,質(zhì)量穩(wěn)定可靠。使用本試劑盒回收的DNA可適用于各種常規(guī)操作,包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern雜交等實(shí)驗(yàn)。

細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒用于細(xì)菌基因組DNA的小量提取。其純化原理是利用細(xì)胞裂解液裂解細(xì)胞釋放基因組DNA,由硅膠膜柱可逆吸附基因組DNA,經(jīng)蛋白酶消化、漂洗液清洗除去蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等雜質(zhì)后,用純化液洗脫獲得基因組DNA。本產(chǎn)品可從0.5-2 ml對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的菌液(不超過(guò)106–108個(gè))中提取到3-20μg超純基因組DNA(OD260/280=1.7-1.9),此基因組DNA可直接用于酶切、PCR等后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

操作步驟:

如非指出,所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)在室溫下離心。

1.取細(xì)菌培養(yǎng)液1–2 ml,10,000 g離心1分鐘,盡量吸凈上清;向細(xì)菌沉淀中加入180μl EB,旋渦混勻后加入18μl溶菌酶,室溫放置10-15分鐘,期間間歇混勻幾次。

2.10,000g離心1分鐘,吸棄大部分上清,留下約10μl液體,徹底混勻。

3.向菌體沉淀中加入200μl緩沖液GA,混勻。

4.向管中加入20μl蛋白酶K,混勻,55℃處理15-30分鐘,期間間歇混勻2-3次至溶液清亮。

5.加入10μl RNaseA(10 mg/ml)溶液,混勻后室溫放置2分鐘。

6.加入220μl緩沖液GB,混勻,70℃放置10-30分鐘(對(duì)于革蘭氏陽(yáng)性菌,時(shí)間應(yīng)延長(zhǎng)到60分鐘)。

7.加入220μl無(wú)水乙醇,充分混勻。

8.將上一步所得溶液和絮狀沉淀加入到吸附柱CG中(吸附柱放入收集管中),11,000g離心5分鐘,倒掉廢液,吸附柱CG放入收集管中。

9.向吸附柱CG中加入500μl去蛋白液GD(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),11,000 g離心2分鐘,倒掉廢液,吸附柱放入收集管中。

10.向吸附柱CG中加入700μl漂洗液GW(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),11,000 g離心60秒,倒掉廢液,吸附柱放入收集管中。

11.向吸附柱CG中加入500μl漂洗液GW,11,000 g離心60秒,倒掉廢液。

12.吸附柱CG放回收集管中,11,000 g離心2分鐘。

13.將吸附柱CG轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加50–100μl經(jīng)70℃水浴預(yù)熱的洗脫緩沖液EB,室溫放置2分鐘,11,000 g離心2分鐘。

14.DNA產(chǎn)物-20℃保存。

應(yīng)用[7][8]

細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒可用于細(xì)菌基因組DNA提?。?/p>

對(duì)蝦腸道中存在大量的微生物群落,它們對(duì)宿主的營(yíng)養(yǎng)、生理、免疫和疾病防御起著重要的作用。近來(lái)微生態(tài)制劑開(kāi)始用于對(duì)蝦養(yǎng)殖中以促進(jìn)其生長(zhǎng)、提高免疫力和減少病害發(fā)生。水產(chǎn)微生態(tài)制劑作為抗生素的替代品,代表水產(chǎn)養(yǎng)殖病害防治當(dāng)前和未來(lái)的發(fā)展方向,但是其被水產(chǎn)動(dòng)物口服后的作用機(jī)理并不是十分清楚。了解對(duì)蝦腸道微生物區(qū)系中微生物的組成、結(jié)構(gòu)及其生理功能如何,在此基礎(chǔ)上可以進(jìn)一步研究外源有益微生物制劑對(duì)其影響,將有助于微生態(tài)制劑在水產(chǎn)養(yǎng)殖中的有效應(yīng)用與推廣。

應(yīng)用PCR-DGGE法和16S rDNA文庫(kù)法研究分析中國(guó)明對(duì)蝦和日本囊對(duì)蝦腸道微生物組成,鑒定其優(yōu)勢(shì)種群;比較分析芽孢桿菌和檸檬酸等對(duì)日本囊對(duì)蝦腸道微生物的影響;比較分析水產(chǎn)常用抗生素氟苯尼考對(duì)日本囊對(duì)蝦腸道微生物的影響,為養(yǎng)殖對(duì)蝦腸道微生物區(qū)系的調(diào)控技術(shù)提供理論依據(jù)。

主要研究結(jié)果如下:1.健康成年中國(guó)明對(duì)蝦腸道微生物樣品經(jīng)DGGE分離得到22個(gè)不同位置的條帶,鑒定后分別屬于變形菌門(mén)(Proteobacteria)和厚壁菌門(mén)(Firmicutes)兩大類(lèi)群,分別為冷桿菌屬,不動(dòng)桿菌屬,假單胞菌屬,希萬(wàn)氏菌屬,海洋螺菌屬,弧菌屬,Thalassobius屬,腸球菌屬:構(gòu)建16S rRNA克隆文庫(kù),克隆子經(jīng)測(cè)序比對(duì)后分別屬于變形菌門(mén)(Proteobacteria)和擬桿菌門(mén)(Bacteroidetes)兩大類(lèi)群,分別為腸桿菌屬,弧菌屬,希萬(wàn)氏菌屬,亮發(fā)菌屬,紅細(xì)菌屬,弓形桿菌屬,Loktanella屬,玫瑰桿菌屬,黃桿菌屬,不可培養(yǎng)細(xì)菌。

參考文獻(xiàn)

[1]Diversity of insect intestinal microflora[J].Folia Microbiologica.2008(3)

[2]Ecophysiology of the Developing Total Bacterial and Lactobacillus Communities in the Terminal Small Intestine of Weaning Piglets[J].Robert Pieper,Pawel Janczyk,Annette Zeyner,Hauke Smidt,Volker Guiard,Wolfgang Bernhard Souffrant.Microbial Ecology.2008(3)

[3]The Microbial Community in the Feces of the Giant Panda(Ailuropoda melanoleuca)as Determined by PCR-TGGE Profiling and Clone Library Analysis[J].Guifang Wei,Haifeng Lu,Zhihua Zhou,Huabiao Xie,Aishan Wang,Karen Nelson,Liping Zhao.Microbial Ecology.2007(1)

[4]Genetic divergence between two morphologically similar varieties of the kuruma shrimp Penaeus japonicus[J].K.H.Tsoi,Z.Y.Wang,K.H.Chu.Marine Biology.2005(2)

[5]Changes in bacterial populations and shrimp production in ponds treated with commercial microbial products[J].Thimmalapura N Devaraja,Fatimah M Yusoff,Mohamed Shariff.Aquaculture.2002(3)

[6]Species-Specific Identification of Commercial Probiotic Strains[J].P.S.M.Yeung,M.E.Sanders,C.L.Kitts,R.Cano,P.S.Tong.Journal of Dairy Science.2002(5)

[7]Immunity enhancement in black tiger shrimp(Penaeus monodon)by a probiont bacterium(Bacillus S11)[J].Sirirat Rengpipat,Sombat Rukpratanporn,Somkiat Piyatiratitivorakul,Piamsak Menasaveta.Aquaculture.2000(4)

[8]劉淮德.應(yīng)用微生物分子生態(tài)學(xué)方法研究對(duì)蝦腸道細(xì)菌組成及其變化規(guī)律[D].中國(guó)科學(xué)院研究生院(海洋研究所),2010.

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