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土壤基因組DNA提取試劑盒

2020/3/19 8:29:39

背景[1-6]

土壤基因組DNA提取試劑盒通過Buffer SCL裂解釋放出基因組DNA,Buffer SP低溫沉淀蛋白等雜質(zhì),再通過氯仿進(jìn)一步純化。但獲得的土壤基因組中可能含有腐殖酸,可與的土壤腐殖酸清除劑(DT81714)聯(lián)合使用,去除土壤中的腐殖酸,避免腐殖酸對(duì)后續(xù)實(shí)驗(yàn)的干擾。試劑盒可從200 mg土壤中可以獲得5~15μg DNA,OD260/OD280比值一般在1.7~1.9之間。抽提出的DNA可用于酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern Blot等相關(guān)實(shí)驗(yàn)。

標(biāo)準(zhǔn)操作步驟:

如非指出,所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)在室溫下離心。

1.稱0.3-0.5 g土壤置于2ml離心管中,加入0.4 g Glass Beads,再加入700μl緩沖液R1與100μl緩沖液R2。渦旋器高速震蕩3-5min。

注意:對(duì)含水量豐富的樣品,可以預(yù)先離心除去部分水分后再稱取樣品。緩沖液R2是腐殖酸去除劑,100μl對(duì)大部分樣品來(lái)說(shuō)足以有效除去腐殖酸等抑制因子。對(duì)一些腐殖酸含量特別豐富的土壤,緩沖液R2的量可以適當(dāng)增加,但不能超過250μl,否則會(huì)嚴(yán)重影響DNA的得率。

2.加入100μl緩沖液R3(R3如有沉淀37℃水浴完全溶解后再用),渦旋混勻。70℃水浴處理10min。期間振蕩幾次。

3.12000 rpm(~13,000g)離心1分鐘,取600μl上清到1.5ml離心管中,加入180μl緩沖液R4混勻。

4.冰上放置5分鐘。12000 rpm(~13,000g)離心1分鐘。轉(zhuǎn)移上清到新的1.5ml離心管中。

5.加入與上清等體積的緩沖液R5(使用前請(qǐng)檢查是否已加入異丙醇),顛倒混勻。

6.取750μl混合液加到吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12000 rpm(~13,000g)離心30秒,倒掉濾出液。

7.將剩余的混合液加到吸附柱中(吸附柱放入收集管中),12000rpm(~13,000g)離心30秒,倒掉濾過液。

8.向吸附柱CG中加入500μl漂洗緩沖液WB1,12,000 rpm(~13,000×g)離心30秒,倒掉廢液。

9.向吸附柱CG中加入600μl漂洗緩沖液PW(使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇),12,000 rpm(~13,000g)離心30秒,倒掉廢液,吸附柱CG放入收集管中。

10.向吸附柱CG中加入600μl漂洗緩沖液PW,12,000 rpm(~13,000g)離心30秒,倒掉廢液,將吸附柱CG放入收集管中。

11.12,000 rpm(~13,000g)離心2分鐘,以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。

12.將吸附柱CG轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的1.5ml離心管中,向吸附膜的中間部位懸空滴加50–100μl經(jīng)70℃水浴預(yù)熱的洗脫緩沖液EB,室溫放置2分鐘,12,000 rpm(~13,000g)離心2分鐘。

13.DNA產(chǎn)物-20℃保存。

DNA濃度及純度檢測(cè):

基因組DNA片段的大小與樣品保存時(shí)間、操作過程中的剪切力等因素有關(guān)。提取的DNA片段可用瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測(cè)濃度與純度??膳渲?.8-1.0%瓊脂糖凝膠,使用λ/HindIII判斷基因組的大小,完整的基因組大小應(yīng)在23kb以上。

使用分光光度計(jì)檢測(cè)時(shí),OD260/OD280比值應(yīng)為1.7–1.9之間,如果洗脫時(shí)不使用洗脫緩沖液,而使用去離子水洗脫,比值可能偏低,但并不表明DNA純度不高。

應(yīng)用[7][8]

土壤基因組DNA提取試劑盒可用于土壤基因組DNA提?。?/p>

建立了兩種從濕地土壤中提取微生物總DNA的方法,即氯化鈣-SDS-酶法(新方法1)和玻璃珠-氯化鈣-SDS法(新方法2)。在直接提取DNA過程中采用氯化鈣去除腐殖酸,DNA提取緩沖液中不使用EDTA螯合劑,提取過程用時(shí)分別為4 h左右和2 h。氯化鈣-SDS-酶法與中科院土壤DNA提取法以及國(guó)產(chǎn)試劑盒兩種方法相比,可高效去除濕地土壤腐殖酸,純度較高,滿足16S rDNA的PCR擴(kuò)增,為微生物生態(tài)學(xué)研究提供了一種高效的濕地土壤微生物總DNA提取和純化技術(shù)。但

方法1應(yīng)用于微生物功能基因的研究受到限制,基于以上原因,我們對(duì)氯化鈣-SDS-酶法進(jìn)行改進(jìn)。依據(jù)微生物不均勻地分布在微團(tuán)聚體內(nèi)部以及微團(tuán)聚體外部的孔隙中并通過不同的結(jié)合機(jī)制緊密地結(jié)合到土壤顆粒上以及氨氧化細(xì)菌(AOB)具有依附性的特點(diǎn),通過玻璃珠分散土壤顆粒內(nèi)部和表面結(jié)合的細(xì)胞,最終獲得一種適用于氨氧化細(xì)菌(AOB)和氨氧化古菌(AOA)amoA基因片段PCR擴(kuò)增的快速DNA提取方法,即玻璃珠-氯化鈣-SDS法,與氯化鈣-SDS-酶法和UltraCleanTM Soil DNA Isolation Kit試劑盒進(jìn)行比較,對(duì)16S rDNA、AOB和AOA中amoA基因片段進(jìn)行PCR擴(kuò)增。

參考文獻(xiàn)

[1]Phylogenetic and functional marker genes to study ammonia-oxidizing microorganisms(AOM)in the environment[J].Pilar Junier,Verónica Molina,Cristina Dorador,Ora Hadas,Ok-Sun Kim,Thomas Junier,Karl-Paul Witzel,Johannes F.Imhoff.Applied Microbiology and Biotechnology.2010(3)

[2]A method for obtaining DNA from compost[J].Liang Wu,Fenge Li,Changyan Deng,Dequan Xu,Siwen Jiang,Yuanzhu Xiong.Applied Microbiology and Biotechnology.2009(2)

[3]A 454 sequencing approach for large scale phylogenomic analysis of the common emperor scorpion(Pandinus imperator)[J].Falko Roeding,Janus Borner,Michael Kube,Sven Klages,Richard Reinhardt,Thorsten Burmester.Molecular Phylogenetics and Evolution.2009(3)

[4]Ammonia-oxidizing archaea involved in nitrogen removal[J].Jia You,Atreyee Das,Elizabeth M.Dolan,Zhiqiang Hu.Water Research.2009(7)

[5]Extracellular DNA in soil and sediment:fate and ecological relevance[J].G.Pietramellara,J.Ascher,F.Borgogni,M.T.Ceccherini,G.Guerri,P.Nannipieri.Biology and Fertility of Soils.2009(3)

[6]Surfactant binding by humic acids in the presence of divalent metal salts[J].Miyuki Matsuda,Akiko Kaminaga,Katumitu Hayakawa,Noboru Takisawa,Tohru Miyajima.Colloids and Surfaces A:Physicochemical and Engineering Aspects.2008(1)

[7]Towards a universally adaptable method for quantitative extraction of high-purity nucleic acids from soil[J].Journal of Microbiological Methods.2008(1)

[8]李靖宇.草原濕地土壤總DNA提取方法及其在氨氧化微生物研究中的應(yīng)用[D].內(nèi)蒙古大學(xué),2011.

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