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昆蟲卵巢細(xì)胞的應(yīng)用

2022/6/28 11:02:01

背景[1-3]

昆蟲卵巢細(xì)胞該細(xì)胞系源于雌性昆蟲的卵巢組織,可以用于復(fù)制桿狀病毒表達(dá)載體,細(xì)胞不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細(xì)菌、酵母和真菌。

昆蟲卵巢細(xì)胞

培養(yǎng)步驟

一.培養(yǎng)基及培養(yǎng)凍存條件準(zhǔn)備:

1)準(zhǔn)備基礎(chǔ)培養(yǎng)基(GIBCO,,添加NaHCO3 1.5g/L,丙酮酸鈉0.11g/L);優(yōu)質(zhì)胎牛血清,10%。

2)培養(yǎng)條件:氣相:空氣,95%;二氧化碳,5%。溫度:37攝氏度,培養(yǎng)箱濕度為70%-80%。

3)凍存液:90%完全培養(yǎng)基,10%DMSO,現(xiàn)用現(xiàn)配。液氮儲(chǔ)存。

二.細(xì)胞處理:

1)復(fù)蘇細(xì)胞:將含有1mL細(xì)胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入4mL培養(yǎng)基混合均勻。在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補(bǔ)加1-2mL培養(yǎng)基后吹勻。然后將所有細(xì)胞懸液加入培養(yǎng)瓶中培養(yǎng)過(guò)夜(或?qū)⒓?xì)胞懸液加入10cm皿中,加入約8ml培養(yǎng)基,培養(yǎng)過(guò)夜)。第二天換液并檢查細(xì)胞密度。

2)昆蟲卵巢細(xì)胞傳代:如果細(xì)胞密度達(dá)80%-90%,即可進(jìn)行傳代培養(yǎng)。

1.棄去培養(yǎng)上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤(rùn)洗細(xì)胞1-2次。

2.加2ml消化液(0.25%Trypsin-0.53mM EDTA)于培養(yǎng)瓶中,置于37℃培養(yǎng)箱中消化1-2分鐘,然后在顯微鏡下觀察細(xì)胞消化情況,若細(xì)胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺(tái),輕敲幾下培養(yǎng)瓶后加少量培養(yǎng)基終止消化。

3.按6-8ml/瓶補(bǔ)加培養(yǎng)基,輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心4分鐘,棄去上清液,補(bǔ)加1-2mL培養(yǎng)液后吹勻。

4.將細(xì)胞懸液按1:2到1:5的比例分到新的含8ml培養(yǎng)基的新皿中或者瓶中。

3)細(xì)胞凍存:待細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好時(shí),可進(jìn)行細(xì)胞凍存。貼壁細(xì)胞凍存時(shí),棄去培養(yǎng)基后加入少量胰酶,細(xì)胞變圓脫落后,加入約1ml含血清的培養(yǎng)基后加入凍存管中,再添加10%DMSO后進(jìn)行凍存。

應(yīng)用[4][5]

用于基于微流控芯片的東亞飛蝗卵巢細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)研究

東亞飛蝗(Locusta migratoria manilensis Meyen)是危害嚴(yán)重的農(nóng)業(yè)害蟲之一,同時(shí)也是良好的實(shí)驗(yàn)?zāi)P?但其細(xì)胞學(xué)研究卻相對(duì)缺乏。

選取東亞飛蝗進(jìn)行其卵巢細(xì)胞體外培養(yǎng)技術(shù)研究,再結(jié)合微流控芯片技術(shù),設(shè)計(jì)了一種可用于動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)的微流控芯片,開展基于微流控芯片的東亞飛蝗卵巢細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)研究。

主要研究結(jié)果如下:1、東亞飛蝗卵巢細(xì)胞體外培養(yǎng)技術(shù)的建立。利用傳統(tǒng)培養(yǎng)平臺(tái),通過(guò)對(duì)東亞飛蝗卵巢細(xì)胞原代培養(yǎng)條件進(jìn)行研究,得到適宜的培養(yǎng)方法:東亞飛蝗體表用75%乙醇消毒50 min,無(wú)菌解剖出的卵巢組織再次選用75%乙醇消毒5 min。卵巢組織直接剪碎成組織塊培養(yǎng)于培養(yǎng)瓶中,接種時(shí)培養(yǎng)基添加量為0.5 ml,后續(xù)培養(yǎng)逐漸補(bǔ)充培養(yǎng)基。培養(yǎng)基選用L-15作為基礎(chǔ)培養(yǎng)基并添加10%胎牛血清。結(jié)果表明東亞飛蝗卵巢細(xì)胞在培養(yǎng)3d左右開始有組織塊貼壁生長(zhǎng),5d左右可觀察到從組織周圍遷移出形態(tài)各異的細(xì)胞,16d左右組織或細(xì)胞貼壁緊密并開始相互連接,拉網(wǎng)生長(zhǎng)。

2、微流控芯片的設(shè)計(jì)、加工及測(cè)試。使用SolidWorks軟件進(jìn)行微流控芯片設(shè)計(jì)和三維建模,并對(duì)芯片進(jìn)行流體力學(xué)仿真及加工工藝的優(yōu)化,最后利用人神經(jīng)母細(xì)胞瘤細(xì)胞系SH-SY5Y評(píng)價(jià)微流控芯片的細(xì)胞培養(yǎng)效果。結(jié)果顯示,選用PMMA及PS作為微流控芯片的制備材料,8mm適宜作為芯片腔室的厚度,芯片加工方式適宜通過(guò)在180℃下熱壓鍵合20min及環(huán)氧樹脂灌封膠粘合來(lái)完成。SH-SY5Y細(xì)胞成功培養(yǎng)于微流控芯片中,細(xì)胞形態(tài)正常,可持續(xù)增殖,且未發(fā)生微生物污染問(wèn)題,說(shuō)明本文設(shè)計(jì)的微流控芯片可滿足動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)需求。

3、基于微流控芯片的東亞飛蝗卵巢細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)。在上述培養(yǎng)技術(shù)及芯片設(shè)計(jì)加工的基礎(chǔ)上,開展了基于微流控芯片的東亞飛蝗卵巢細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)研究。結(jié)果顯示卵巢細(xì)胞在芯片中培養(yǎng)至8d左右可觀察到組織塊貼壁,在適宜的條件下,目前東亞飛蝗卵巢細(xì)胞在微流控芯片的生長(zhǎng)時(shí)間可達(dá)30天以上。

參考文獻(xiàn)

[1]An impedance-coupled microfluidic device for single-cell analysis of primary cell wall regeneration[J].Lincai Chen,Ziyu Han,Xintong Fan,Shuaihua Zhang,Jiehua Wang,Xuexin Duan.Biosensors and Bioelectronics.2020(prep)

[2]Modeling neural tube development by differentiation of human embryonic stem cells in a microfluidic WNT gradient.[J].Rifes Pedro,Isaksson Marc,Rathore Gaurav Singh,Aldrin-Kirk Patrick,M?ller Oliver Knights,Barzaghi Guido,Lee Julie,Egerod Kristoffer Lihme,Rausch Dylan M,Parmar Malin,Pers Tune H,Laurell Thomas,Kirkeby Agnete.Nature biotechnology.2020(11)

[3]Localized microinjection of intact Drosophila melanogaster larva to investigate the effect of serotonin on heart rate[J].Alireza Zabihihesari,Arthur J.Hilliker,Pouya Rezai.Lab on a Chip.2019(2)

[4]Invertebrate Retinal Progenitors as Regenerative Models in a Microfluidic System[J].Caroline D.Pena,Stephanie Zhang,Robert Majeska,Tadmiri Venkatesh,Maribel Vazquez,Yunqing(Kevin)Kang.Cells.2019(10)

[5]歐英琪.基于微流控芯片的東亞飛蝗卵巢細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)研究[D].中央民族大學(xué),2021.

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